مجله پژوهش در متابولیت‌های  گیاهی

مجله پژوهش در متابولیت‌های گیاهی

ارزیابی پرایمینگ بذر بر رفتار جوانه‌زنی گیاه کینوا (Chenopodium quinoa Willd.) و فعالیت‌های آنزیمی در شرایط تنش نیترات سرب

نوع مقاله : مقاله پژوهشی

نویسندگان
1 گروه مهندسی تولید و ژنتیک گیاهی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی خوزستان، ملاثانی، ایران.
2 گروه مهندسی تولید و ژنتیک گیاهی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی خوزستان، ملاثانی، ایران
10.22034/jrpsm.2026.583542.1115
چکیده
سابقه و هدف: در دهه‌های اخیر، افزایش غلظت فلزات سنگین در خاک‌های کشاورزی به دلیل فعالیت‌های صنعتی و انسانی، به یکی از چالش‌های مهم زیست‌محیطی تبدیل شده است. سرب، از پایدارترین و سمی‌ترین فلزات سنگین، با ایجاد تنش اکسیداتیو، اختلال در جذب آب و اختلال در فعالیت‌های متابولیکی، تأثیرات مخربی بر مراحل اولیه رشد، به‌ویژه جوانه‌زنی و استقرار گیاهچه دارد. کینوا، یک شبه‌غله با ارزش غذایی بالا و مقاوم به شرایط نامساعد، پتانسیل خوبی برای کشت در مناطق تحت تنش دارد، اما در مراحل اولیه رشد به سمیت سرب حساس است. فناوری پرایمینگ بذر یک راهکار مدرن و کم‌هزینه برای مقابله با این چالش محسوب می‌شود. با وجود مطالعات متعدد، مقایسه همزمان کارایی منابع مختلف آهن (به‌ویژه نانوذرات) و کلسیم در تعدیل سمیت سرب در کینوا کمتر مورد توجه قرار گرفته است. لذا این پژوهش با هدف ارزیابی و مقایسه اثر پرایمینگ با نانوآهن، کلرید آهن و سولفات کلسیم بر شاخص‌های جوانه‌زنی، فعالیت سیستم دفاع آنتی‌اکسیدانی و تجمع سرب در گیاهچه کینوا انجام شد.
مواد و روش‌ها: این آزمایش فاکتوریل، بر پایه طرح کاملاً تصادفی با سه تکرار، در سال 1403 در آزمایشگاه فناوری بذر دانشگاه خوزستان انجام شد. تیمارهای پرایمینگ شامل کلرید آهن و نانوآهن در غلظت‌های 0، 4، 6، 8 و 10 میلی‌گرم بر کیلوگرم و سولفات کلسیم در غلظت‌های 0، 5/0، ۱، 5/1 و 2 میلی‌مولار بود. بذرها به مدت 6 ساعت در محلول غوطه‌ور شدند. پس از پرایمینگ، بذرها در ژرمیناتور در معرض سطوح تنش نیترات سرب (0، 20، 40، 80 و 100 میلی‌گرم بر کیلوگرم) قرار گرفتند. جوانه‌زنی روزانه به مدت یک هفته پایش شد. پارامترهای مورفولوژیکی (طول ریشه‌چه و ساقه‌چه) با استفاده از نرم‌افزار دیجیمایزر اندازه‌گیری شدند. شاخص‌های استاندارد، درصد جوانه‌زنی (GP)، سرعت جوانه‌زنی (GR)، میانگین زمان جوانه‌زنی (MGT) و شاخص بنیه گیاهچه (SVI) محاسبه شدند. فعالیت آنزیم‌های آنتی‌اکسیدانی (کاتالاز، پراکسیداز) به روش اسپکتروفتومتری اندازه‌گیری شدند. تجمع سرب در بافت‌ها پس از هضم اسیدی از طریق اسپکتروفتومتری جذب اتمی تعیین شد. تجزیه و تحلیل آماری با استفاده از نرم‌افزار SAS و مقایسه میانگین‌ها با آزمون LSD در سطح احتمال ۵ درصد انجام شد. روش اسلایس، اثرات متقابل را در سطوح مختلف تنش تجزیه و تحلیل کرد.
یافته‌ها: نتایج تجزیه واریانس نشان داد که تمامی شاخص‌های مورد مطالعه تحت تأثیر معنی‌دار تنش سرب و تیمارهای پرایمینگ قرار گرفتند. افزایش غلظت نیترات سرب منجر به کاهش شدید درصد جوانه‌زنی، سرعت جوانه‌زنی و شاخص بنیه بذر شد و متوسط زمان جوانه‌زنی را به طور معنی‌داری افزایش داد. در مقابل، تیمارهای پرایمینگ توانستند بخش عمده‌ای از این اثرات بازدارنده را خنثی کنند. بر اساس یافته‌های مقایسه میانگین، سولفات کلسیم در غلظت‌های ۱ تا ۲ میلی‌مولار برترین تیمار در بهبود شاخص‌های جوانه‌زنی بود؛ به طوری که حتی در بالاترین سطح تنش سرب، درصد جوانه‌زنی را در سطح ۹۳ درصد حفظ کرد. در بخش صفات مورفولوژیک، پرایمینگ با آهن کارایی بالاتری نشان داد. نانوآهن در غلظت ۶ میلی‌گرم بر کیلوگرم بیشترین تأثیر را در بهبود طول ساقه‌چه و ریشه‌چه در شرایط تنش ملایم و متوسط داشت، در حالی که در تنش شدید، کلرید آهن در غلظت ۱۰ میلی‌گرم بر کیلوگرم عملکرد بهتری در حفظ بنیه گیاهچه نشان داد. بررسی‌های بیوشیمیایی نشان داد که با تشدید تنش سرب، فعالیت آنزیم‌های کاتالاز و پراکسیداز به عنوان مکانیسم دفاعی افزایش یافت. تیمارهای پرایمینگ (به‌ویژه کلرید آهن ۱۰ میلی‌گرم بر کیلوگرم و سولفات کلسیم ۲ میلی‌مولار) با تقویت این سیستم آنتی‌اکسیدانی، منجر به افزایش معنی‌دار فعالیت این آنزیم‌ها نسبت به شاهد بدون پرایم شدند که این امر به کاهش آسیب‌های اکسیداتیو و پایداری بیشتر غشاهای سلولی کمک کرد. یافته مهم دیگر، تأثیر پرایمینگ بر محتوای فلز سنگین در گیاهچه بود؛ آنالیز جذب اتمی نشان داد که پرایمینگ با کلرید آهن ۱۰ میلی‌گرم بر کیلوگرم تجمع سرب را در بافت‌های گیاهچه در بالاترین سطح تنش تا حدود ۴۸ درصد کاهش داد. این پدیده احتمالاً ناشی از رقابت یون‌های آهن با سرب در محل‌های جذب و بهبود پایداری غشا در بذرهای پرایم شده است.
نتیجه‌گیری: این پژوهش تأیید کرد که اگرچه تنش سرب محدودیت جدی برای استقرار اولیه کینوا ایجاد می‌کند، پرایمینگ بذر با عناصر کلسیم و آهن راهکاری کارآمد برای تعدیل این سمیت است. سولفات کلسیم نه تنها از طریق یون کلسیم باعث بهبود فرآیندهای فیزیکی و آنزیمی اولیه می‌شود، بلکه بخش سولفات آن نیز با فراهم کردن بنیان گوگردی لازم برای تقویت سیستم دفاع آنتی‌اکسیدانی، نقش موثری در تعدیل سمیت سرب ایفا کرده و سرعت و درصد جوانه‌زنی را تضمین می‌کند. در مقابل، پرایمینگ با آهن (به‌ویژه نانوآهن در دوزهای پایین و کلرید آهن در دوزهای بالا) رشد گیاهچه و تقویت بنیه بذر را تحریک می‌کند. در این میان، کلرید آهن برتری محسوس در ارتقای فعالیت‌های آنزیمی (کاتالاز و پراکسیداز)، نشلن داد وکارایی چشم‌گیری در تقویت سیستم دفاع آنتی‌اکسیدانی و جلوگیری از ورود بیش از حد سرب به بافت‌های گیاهی داشت. لذا استفاده از این تیمارها برای بهبود استقرار کینوا در خاک‌های آلوده به فلزات سنگین پیشنهاد می‌گردد.
کلیدواژه‌ها

Abdoli, M. (2020). The effect of seed aging and hydro-priming on germination indices and the activity of some antioxidant enzymes in maize hybrid (Zea mays L.). Iranian Journal of Seed Science and Research, 7(2), 147-159. [In Persian].
Abdul‐Baki, A. A., & Anderson, J. D. (1973). Vigor determination in soybean seed by multiple criteria 1. Crop science13(6), 630-633.
Afzal, I., Basra, S. M. A., Ahmad, N., & Farooq, M. (2005). Optimization of hormonal priming techniques for alleviation of salinity stress in wheat (Triticum aestivum L.). Cereal Research Communications, 33(4), 629-634. https://doi.org/10.1007/BF03543587
Aghaei, K., Rah-khosravani, B., Moghanloo, L., & Ghotbi Ravandi, A. A. (2019). Investigating the effect of cadmium accumulation on some biochemical and physiological characteristics in basil (Ocimum basilicum L.). Journal of Plant Process and Function, 8(33), 107-122. [In Persian].
Alharby, H. F., Al-Zahrani, H. S., & Abbas, G. (2022). Potassium and silicon synergistically increase cadmium and lead tolerance and phytostabilization by quinoa through modulation of physiological and biochemical attributes. Toxics, 10(4), 169. https://doi.org/10.3390/toxics10040169
Ameri, A., Fatemi, H., Aroiee, H., & Teixeira da Silva, J.A. (2011). What's the Effect of Saline Priming on Germination Factors of Capsicum annuum var.'California Wonder Seeds? Seed Science and Biotechnology, 5(1), 47-49.
Amini, F., Balouchi, H. R., Movahedi Dehnavi, M., & Attarzadeh, M. (2016). Effect of different concentrations of some heavy metals on germination indices and seed vigor of pinto bean (Phaseolus vulgaris L.). Iranian Journal of Seed Science and Research, 3(2), 95-105. [In Persian].
Amraei, N., & Omidi, H. (2022). Evaluation of the effects of insecticide pre-treatments at different temperatures on germination indices and seedling growth of fuzzy and delinted seeds of two cotton cultivars in the study of seedling growth and germination indices of quinoa genotypes (Chenopodium quinoa Willd.). Seed Research, 12(1), 46-53. [In Persian].
Andrade, V. L., Ribeiro, I., Dos Santos, A. P. M., Aschner, M., & Mateus, M. L. (2023). Metals in Cow Milk and Soy Beverages: Is There a Concern? Toxics, 11(12), 1013. https://doi.org/10.3390/toxics11121013
Ansari, O., Gherekhloo, J., Kamkar, B., and Ghaderi-Far, F. (2016). Breaking seed dormancy and determining cardinal temperatures for Malva sylvestris using nonlinear regression. Seed Science and Technology, 44(3), 1-14.
Apel, K., & Hirt, H. (2004). Reactive oxygen species: metabolism, oxidative stress, and signal transduction. Annual Review of Plant Biology, 55, 373–399. https://doi.org/10.1146/annurev.arplant.55.031903.141701
Arnold, B.R., Fenner, M., & Edwards, P. (1991). Changes in germinability, ABA content, and ABA embryonic sensitivity in developing seeds of Sorghum bicolor (L.) Moench induced by water stress during grain filling. New Phytologist, 118, 339-347.
Atıs, I., Çelik, H., & Ertekin, I. (2024). Germination and early seedling growth in sweet sorghum exposed to heavy metal stress under seed priming pretreatments. International Journal of Agriculture and Wildlife Science, 10(2), 257-272.
Aygun, Y. Z, Atıs, I., &Ertekin, I. (2022). Kadmiyum stresi (CdCl2) altında farklı kinoa (Chenopodium quinoa Willd.) genotiplerinin çimlenme ve ilk fide gelişimi. Mustafa Kemal Üniversitesi Tarım Bilimleri Dergisi, 27(1), 1-8.
Bajji M., Kinet, J.M., & Lutts, S. (2002). Osmotic and ionic effects of NaCl on germination early seedling growth and ion content of Atriplex halimus (chenopodiaceae). Canadian Journal of Botany, 80, 297-304.
Bamagoos, A.A., Alharby, H.F., & Abbas, G. (2022). Differential uptake and translocation of cadmium and lead by quinoa: A multivariate comparison of physiological and oxidative stress responses. Toxics,10(2), 68.
Borsani, O., Valpuesta, V., & Botella, M.A. (2001). Evidence for a role of salicylic acid in the oxidative damage generated by NaCl and osmotic stress in Arabidopsis seedlings. Plant physiology, 126(3), 1024-1030. https://doi.org/10.1104/pp.126.3.1024
Callahan, D. L., Baker, A. J. M., Kolev, S. D., & Wedd, A. G. (2005). Metal ion ligands in hyper accumulating plants. Journal of Biological Inorganic Chemistry, 11(1), 2-12.
Chehregani Rad, A., Farzan, S., & Shirkhani, Z. (2017). A study on the effect of lead treatment on some morphological and physiological indices of petunia (Petunia hybrida L.). Journal of Plant Research (Iranian Journal of Biology), 30(1), 47-57. [In Persian].
Dhindsa, R.S., & Matowe, W. (1981). Drought tolerance in two mosses: correlated with enzymatic defense against lipid peroxidation. Journal of Experimental Botany, 32(1), 79-91.
Dinakar, N., Nagajyoth, P.C., Suresh, S., Damodharam, T., & Suresh, C. (2009). Cadmium induced changes on proline, antioxidant enzymes, nitrate and nitrite reductases in Arachis hypogaea L. Journal of Environmental Biology, 30(2), 289-294.
Esechie, H. A. (1994). Effect of temperature on salinity tolerance of Desmodium at germination stage. In Plant Production on the Threshold of a New Century: Proceedings of the International Conference at the Occasion of the 75th Anniversary of the Wageningen Agricultural University, Wageningen, The Netherlands, held June 28–July 1, 1993 (pp. 447-449). Dordrecht: Springer Netherlands
Gomez, A., Narayan, M., Zhao, L., Jia, X., Bernal, R.A., Lopez-Moreno, M.L., & Peralta-Videa, J.R. (2021). Effects of nano-enabled agricultural strategies on food quality: Current knowledge and future research needs. Journal of Hazardous Materials, 401, 123385. https://doi.org/10.1016/j.jhazmat.2020.123385
Gupta, N., Singh, P.M., Sagar, V., Pandya, A., Chinnappa, M., Kumar, R., & Bahadur, A. (2022). Seed priming with ZnO and Fe3O4 nanoparticles alleviate the Lead toxicity in Basella alba L. through reduced Lead uptake and regulation of ROS. Plants, 11, 2227. https://doi.org/10.3390/plants11172227
Hashemi Shahraki, Sh. (2025). Growth and Biochemical Responses of Sadough Quinoa (Chenopodium quinoa) under Lead Stress. Quality and Durability of Agricultural Products and Food Stuffs, 5(2), 61-71. [In Persian].DOI: https://doi.org/10.71516/qafj.2025.1222724.
Iftikhar, A., Abbas, G., Saqib, M., Shabbir, A., Amjad, M., Shahid, M. (2022). Salinity modulates lead (Pb) tolerance and phytoremediation potential of quinoa: A multivariate comparison of physiological and biochemical attributes. Environmental Geochemistry and Health, 44(1), 257-72.
Ikic, I., Maric evic, M., Tomasovic, S., Gunjaca, J., Atovic, Z. S., & Arcevic, H. S. (2012). The effect of germination temperature on seed dormancy in Croatian-grown winter wheats. Euphytica, 188, 25-34. https://doi.org/10.1007/s10681-012-0695-8
ISTA. (2012). International rules for seed testing, edition 2012. Bassersdorf. Switzerland.
Jacobsen, S.E., Liu, F., & Jensen, C.R. (2009). Does root-sourced ABA play a role for the regulation of stomata under drought in quinoa (Chenopodium quinoa Willd.). Scientia Horticulturae, 122, 281-287.
Jini, D., & Joseph, B. (2017). Physiological mechanism of salicylic acid for alleviation of salt stress in rice. Rice Science, 24(2), 97-108. https://doi.org/10.1016/j.rsci.2016.0
Karim, M.N., Sani, M.N.H., Uddain, J., Azad, M.O.K., Kabir, M.S., Rahman, M.S., Choi, K.Y., & Naznin, T. (2020). Stimulatory effect of seed priming as a pretreatment factor on germination and yield performance of yard long bean (Vigna unguiculata). Horticulturae,6(104), 1-13.
Khan, M.I., Fatma, M., Per T.S., Anjum N., & Khan, A. (2015). Salicylic acid-induced abiotic stress tolerance and underlying mechanisms in plants. Frontiers in Plant Science, 6, 462-770. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/26175738
Khanna, K., Kohli, S. K., Bali, S., Kaur, P., Saini, P., Bakshi, P., & Bhardwaj, R. (2018). Role of micro-organisms in modulating antioxidant defence in plants exposed to metal toxicity. In plants under metal and metalloid stress, 303 - 335. http://dx.doi.org/10.1016/j.plaphy.2014.07.005
Li, H., Sun, Y. L., Yu, X. H., Guo, H. P., Lian, H. F., Sun, X. D., Shi, Q. H., & Liu, S. Q. (2015). Effects of exogenous calcium on the growth and physiological traits of garlic seedlings under cadmium stress. Journal of Animal and Plant Sciences, 25(3), 107-113. 
Mahdi, I., Fahsi, N., Hafidi, M., Benjelloun, S., Allaoui, A., & Biskri, L. (2021). Rhizospheric phosphate solubilizing Bacillus atrophaeus GQJK17 S8 increases quinoa seedling, withstands heavy metals, and mitigates salt stress. Sustainability, 13(6), 3307. https://doi.org/10.3390/su13063307
Mazhar, M. W., Ishtiaq, M., Maqbool, M., & Akram, R. (2020). Seed priming with Calcium oxide nanoparticles improves germination, biomass, antioxidant defense and yield traits of canola plants under drought stress. South African Journal of Botany, 151, 889-899. https://doi.org/10.1016/j.sajb.2020.10.031
Miller, T., & Chapman, S. J. (1978). Germination responses of three forage grasses to different concentration of six salts. Journal of Range Management, 31(2), 123-124. http://dx.doi.org/10.2307/3897659
Motuzova, G. V., Minkina, T. M., Karpova, E. A., Barsova, N. U., & Mandzhieva, S. S. (2014). Soil contamination with heavy metals as a potential and real risk to the environment. Journal of Geochemical Exploration. 144, 241 - 246. http://dx.doi.org/10.1016/j.jenvman.2013.04.016
Naik, S., Paramesh, R., Siddaraju, R., & Ravi Shankar, P. (2020). Studies on growth parameters in quinoa (Chenopodium quinoa Willd.). International Journal of Chemical Studies, 8(1), 393-397. https://doi.org/10.22271/chemi.2020.v8.i1f.8278
Najafi, Gh., Khomari, S., & Javadi, A. (2015). Germination response of canola seeds to seed vigor changes and hydropriming. Seed Science Research, 45(4), 55-70. https://doi.org/20.1001.1.22520961.1394.5.17.6.9
Nawaz, F., Naeem, M., Akram, A., Ashraf, M.Y., Ahmad, K.S., Zulfiqar, B., Sardar, H., Shabbir, R.N., Majeed, S., Shehzad, M.A., & Anwar, I. (2017). Seed priming with KNO3 mediates biochemical processes to inhibit lead toxicity in maize (Zea mays L.). Journal of the Science of Food and Agriculture, 97(14), 4780-4789.
Nourhosseini, S.A., Safarzadeh, M.N., & Sadeghi, S.M. (2016). Evaluation of germination energy, germination value, and seed vigor indices in peanut (Arachis hypogaea L.). Iranian Journal of Plant Research (Iranian Journal of Biology), 29(1), 221–234. [In Persian]
Nouri, M., & Haddioui, A. (2021). Improving seed germination and seedling growth of Lepidium sativum with different priming methods under arsenic stress. Acta Ecological Sinica, 41(1), 64-71. https://doi.org/10.1016/j.chnaes.2020.08.004
Orchard, T. J. (1977). Estimating the parameters of plant seedling emergence.
Palve, S., Ahire, D., & Gahile, Y. (2022). Salicylic acid pretreatment effects on Beta vulgaris L. multigerm germination and germination indices. International Journal of Biosciences, 20(1), 59-71.
Park, J.H., Choppala, G., Lee, S.J., Bolan, N., Chung, J.W., & Edraki M. (2013). Comparative sorption of Pb and Cd by biochars and its implication for metal immobilization in soils. Water, Air and Soil Pollution, 224: 1-12.
Parmon, G., Ebadi, A., Ghahramani, M., & Mousavi, S. A. (2014). The effect of heavy metals on germination indices and vigor of maize seeds under laboratory conditions. Seed Research, 4(12), 40-51. [In Persian].
Peralta, J.R., Gardea-Torresdey, J.L., & Tiemann, K.J. (2000). Study of the effects of heavy metals on seed germination and plant growth on alfalfa plant (Medicago sativa) grown in solid media. Proceedings of the 2000 Conference on Hazardous Waste Research, pp. 135-140.
Pourrut, B., Shahid, M., Dumat, C., Winterton, P., & Pinelli, E. (2011). Lead uptake, toxicity, and detoxification in plants. Reviews of Environmental Contamination and Toxicology, 213, 113 - 136. http://dx.doi.org/10.1016/j.jhazmat.2010.10.047
Prasad, A.S. (2003). Zinc deficiency. British Medical Journal. 326: 409-410.
Rahman Khan, M., & Mahmud Khan, M. (2010). Effect of varying concentrations of nickel and cobalt on the plant growth and yield of chickpea. Australian Journal Basic and Applied Science, 4(6), 1036-104.
Rezaei, B., Amirinejad, A. A., & Ghobadi, M. (2022). Interaction effects of lead nitrate, salicylic acid, and biochar on the growth characteristics of thyme (Thymus vulgaris L.). Journal of Water and Soil, 36(1), 67-79. [In Persian].
Rizwan, M., Ali, S., Ali, B., Adrees, M., Arshad, M., Hussain, A., & Waris, A. A. (2019). Zinc and iron oxide nanoparticles improved the plant growth and reduced the oxidative stress and cadmium concentration in wheat. Chemosphere, 214, 269-277. https://doi.org/10.1016/j.chemosphere.2018.09.120
Roosta, H.R., Jalali, M., & Ali Vakili Shahrbabaki, S.M. (2015). Effect of Nano Fe-Chelate, FeEddha and FeSO4on Vegetative Growth, Physiological Parameters and Some Nutrient Elements Concentrations of Four Varieties of Lettuce (Lactuca sativa L.) In NFT System. Jornal of Plant Nutrtent, 38, 2176–2184. https://doi.org/10.1080/01904167.2015.1043378
Sekabira, K., Oryem- Origa, H., Mutumba, G., Kakudidi, E., & Basamba, T.A. (2011). Heavy metal phytoremediation by Commelina benghalensis (L) and Cynodon dactylon (L) growing in Urban stream sediments. International Journal of Plant Physiology and Biochemistry, 3(8), 133-142.
Shah, A. A., Ahmed, S., Abbas, M., & Yasin, N. A. (2020). Seed priming with 3-epibrassinolide alleviates cadmium stress in Cucumis sativus through modulation of antioxi-dative system and gene expression. Scientia Horticulturae, 265, 109203. https://doi.org/10.1016/j.scienta.2020.109203
Soltanzadeh Pormehr, S., Maleki Lajayer, H., Torabi Giglou, M., Esmaielpour, B., Chamani, E., & Pourbeyrami Hir, Y. (2021). Effects of dill seed priming with salicylic acid under lead and cadmium heavy metal stress. Journal of Seed Research, 4(3), 33-44. [In Persian].
Taie, H. A., El-Yazal, M. A. S., Ahmed, S. M., & Rady, M. M. (2019). Polyamines modulate growth, antioxidant activity, and genomic DNA in heavy metal-stressed wheat plant. Environmental Science and Pollution Research, 26, 22338-22350.
Vahdani Rashvanlouei, M., Jami Al-Ahmadi, M., Siari Zehan, M.H., Shorideh, H., & Mostafaei, M. (2023). Effect of seed nutritional priming with iron sulfate and zinc sulfate on germination characteristics and seedling growth of lentil seeds. Seed Research, 13(2), 1–14. [In Persian]
Venkatachalam, P., Jayalakshmi, N., Geetha, N., Sahi, S. V., Sharma, N. C., Rene, E. R., Sarkar, S. K., & Favas P. J. C. (2017) Accumulation efficiency, genotoxicity and antioxidant defense mechanisms in medicinal plant Acalypha indica L. under lead stress. Chemosphere, 171, 544-553.
Wang, W., He, A., Peng, S., Huang, J., Cui, K., & Nie, L. (2018). The effect of storage condition and duration on the deterioration of primed rice seeds. Frontiers in Plant Science, 9, 1-17.
Xin, Y., Liu, M., Wei, L., Gao, Y., Ruan, Y., Wang, Q., & Zhang, Z. (2023). Changes in soil chemical properties and rhizosphere bacterial community induced by soil amendments associated with reduction in cadmium accumulation by rice. Agronomy, 13(12), 3051. https://doi.org/10.3390/agronomy13123051
Yang, Y., Wei, X., Lu, J., You, J., Wang, W., & Shi, R. (2010). Lead-induced phytotoxicity mechanism involved in seed germination and seedling growth of wheat (Triticum aestivum L.). Ecotoxicology and Environmental Safety, 73(8): 1982-1987.
Yang, Y., Zhang, Y., Wei, X., You, J., Wang, W., Lu, J., & Shi, R. (2011). Comparative antioxidative responses and proline metabolism in two wheat cultivars under short term lead stress. Ecotoxicology and Environmental Safety 74, 733-740.
Zhou, P., Adeel, M., Shakoor, N., Guo, M., Hao, Y., & Azeem, I. (2021). Application of nanoparticles alleviates heavy metals stress and promotes plant growth: An overview. Nanomaterials, 11, 26-38.