مجله پژوهش در متابولیت‌های  گیاهی

مجله پژوهش در متابولیت‌های گیاهی

اثر تنش شوری بر متابولیت‌های ثانویه و رفتار رشدی کنگر فرنگی در شرایط درون شیشه‌ای

نوع مقاله : مقاله پژوهشی

نویسندگان
1 کارشناسی ارشد علوم باغبانی _گرایش گیاهان دارویی دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان
2 دانشیار دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان دانشکده تولید گیاهی
چکیده
کنگرفرنگی یک گیاه دارویی با‌ارزش غذایی و اقتصادی است که با سطح وسیعی از زمین‌های کم‌آب و شور روبرو می‌باشد. تحقیق حاضر در دو آزمایش جداگانه در قالب طرح کاملاً تصادفی با هدف بررسی اثر شوری بر رشد و متابولیت‌های ثانویه گیاه مذکور انجام شد. این آزمایش به دو صورت کشت ریزنمونه در محیط کشت جامد MS با غلظت‌های (0، 50، 150، 300، 600، 1200 میکرومولار NaCl) و کشت کالوس در محیط مشابه با غلظت‌های (0، 50، 150، 300، 600، 1200، 2000، 4000، 6000 و 75000 میکرومولار NaCl) صورت گرفت. پس از چهار هفته صفات فیزیولوژیک و بیوشیمیایی آن مورد بررسی قرار گرفت. نتایج حاصله نشان‌دهنده روند کاهشی در رنگدانه‌های درونی با افزایش غلظت شوری بود. همچنین مشاهده شد که در کشت ریزنمونه با افزایش شوری وزن ‌تر کالوس کاهش یافت (بیشترین وزن تر مربوط به شاهد و کمترین مربوط به سطح شوری 1200 میکرومولار) و در کشت کالوس بیشترین وزن تر مربوط به سطح شوری 75000 میکرومولار بوده است. در همه سطوح شوری تراکم رنگدانه‌ها نمونه‌های کشت ریزنمونه نسبت به نمونه‌های کشت کالوس بیشتر بود. بررسی تغییرات ترکیبات فنلی و آنتی‌اکسیدانی نشان داد که برخلاف کشت ریزنمونه در کشت کالوس، اختلاف معنی‌داری بر میزان درصد مهار رادیکال آزاد، اسید کلروجنیک و اسید کافئیک وجود دارد (بیشترین مقادیر این ترکیبات به ترتیب مربوط به تیمار 150 میکرومولار، شاهد و 2000 میکرومولار).
کلیدواژه‌ها

Alamanni, M. and Cossu, M., 2003. Antioxidant activity of the extracts of the edible part of artichoke (Cynara scolymus L.) var. spinoso sardo. Italian Journal of Food Science, 15(2): 187-195.
Alizadeh, M. 2018. Guide for users of plant tissue culture and micropropagation. Nowrozi Publications, Gorgan, pp. 238-239 and 322. (In Persian).
Arzani, A. 2008. Improving salinity tolerance in crop plants: a biotechnological View.in vitro cellular and developmental Biology-Plant. 44(5): 373-383.
Borence, H.J., Su. H., Shen, B. 1992. Molecular mechanisms of salinity tolerance. 30-60.
Castañeda, C.S., Almanza-Merchán, P.J., Pinzón, E.H., Cely, G.E. and Serrano, P.A., 2018. Estimación de la concentración de clorofila mediante métodos no destructivos en vid (Vitis vinifera L.) cv. Riesling Becker. Revista Colombiana de Ciencias Hortícolas, 12(2): 329-337.
Charbaji, T., Ayyoubi, Z. 2004. Differental Growth of Som Grapevine varieties in respons to salt in vitro. Biology-plant 40(2): 221-224.
Dehpour, A.A, Gholampour, M., Rahdary, P., Jafari Tolubaghi, M.R., Medi hamid, S.M. 2011. Effect of gamma irradiation, callus, protein and proline in rice (Oryza Sativa L.). Iranian Journal of plant physiology.1 (4): 251-256.
Djeridane, M., Yousfi, B., Nadjemi, D., Boutassouna, P. and stocker, N. 2006. Antioxidant activity of some Algerian medicinal plants extractscontaining phenolic compounds, Food chem. 97: 654-660
Ebrahimzade, M.A., Pourmorad, F. and Hafezi, S. 2008. Antioxidant Activities of Iranian Corn Silk. Turkish Journal of Biology. 32: 43-49.
El sayed, H., El sayed, A. 2011. solaiton and characterization of NaCl resistant callus culture of field pea (Pisum sativum, L.) to salinity. Agriculture and biology journal North America. 2 (6): 964-973.
Gary, G. 2010. In vitro screening of catharanthus Roseus L. cultivars for salt tolerance using physiological parameters. International journal of environmental science and development. 1 (1): 2010-0264.
Kosova, K., Ilja, T., Vitamvas, P. 2013. Protein Contribution to Plant Salinity Response and tolerance Acquisition.14: 6757-6789.
Meleigy, S., Gabr, M., Mohamed, F., Ismail, M. 2004. Responses to Nacl salinity of tomato cultivated and Breeding lines Differring in salt tolerance in callus cultures. International journal of Agriculture and Biology.6(1): 1560-8530.
Nasher mohamad, A., Ismail, M.R., Kadir, M.A, Saud, H.M. 2011. In virto performances of hypocotyl and cotyledon explants of tomato cultivars under sodium chloride stress. African Journal of Biotechnology. 1(44): 8757-8764.
Omidi, M., Farzin, N., 2009. Biotechnology solutions in increasing the efficiency of medicinal plants. Regional conference of food and biotechnology.153-157. (In Persian).
Sabir, F., Sangwan, R., Kumar, R., Sangwan, N., 2012. Salt Stress-induced Responses in Growth and Metabolism in Callus Cultures and Differentiating in Vitro Shoots of Indian Ginseng (Withania somnifera Dunal). J Plant Growth Regul DOI 10.1007/s00344-012-9264-x.
Sarahi Nobar, M., Niknam, V., Moradi, B. 2019. The effect of salinity stress on the content of protein, pigments, sugars and phenolic compounds in tissue culture of several species of Iranian fenugreek. Tehran University Science Journal. 36 (2): 53-59 (In Persian).
Taiz and Zaiger. 2009. Plant Physiology 2. Translation, Kafi, M., Zand, A., Kamkar, B., Abbasi, F., Mahdavi Damghani, M., Mashhad University Jihad pp. 613-60 (In Persian).
Trajtemberg, S., Apsotolo, N., Fernandez, G. 2006. Calluses of cynara cardancalus var. cardancolus cardon (Asteraceae): determination of cynarin and chlorogenic acid by Automated high-performance capillary electrophoresis. Biology-plant 42: 534-537.